OPINIÓN
El avance, un gran potencial
TANTO EL método de Lanza como el de Jaenisch y Meissner tienen un gran potencial a la hora de obtener células madre embrionarias sin detener el desarrollo de un embrión viable. En el de Lanza se obtienen blastómeras de embriones de tres días (ocho blastómeras) y se diferencian in vitro a células madre embrionarias. La técnica es similar a la utilizada en diagnóstico preimplantacional (DGP) y el embrión al que se le ha sustraído la blastómera puede desarrollarse normalmente. En el método de Jaenisch y Meissner se inactiva un gen en la célula somática que se va a utilizar para hacer la transferencia nuclear, de tal forma que el embrión resultante no tiene la capacidad de implantarse en el útero y, por lo tanto, no se puede considerar un embrión viable. Ambos métodos obviarían, al menos en parte, los problemas religiosos y éticos que plantea la clonación terapéutica, ya que no se estarían destruyendo embriones viables para obtener células madre embrionarias. Pero han sido probados en ratones y, por lo tanto, los resultados están en fase experimental y no pueden extrapolarse a humanos. Pero tanto un método como otro requieren del uso de ovocitos fecundados para poder hacer la clonación terapéutica con el mismo genoma del paciente, ya sea a través de embriones de tres días o por transferencia nuclear. Ello supone un problema logístico muy importante, ya que, dada la tan baja eficiencia de esta técnica (en el caso de la oveja Dolly se necesitaron unos 277 intentos), se precisarían millones de donantes de ovocitos y la realización de millones de ciclos de in vitro para cubrir las necesidades de trasplantes de células embrionarias diferenciadas, por ejemplo, de células beta pancreáticas productoras de insulina en el caso de diabéticos. Los costos serían astronómicos. El futuro de la clonación terapéutica está en poder llevar a cabo la llamada reprogramación nuclear en la que el núcleo de una célula somática se programaría para poner en marcha el desarrollo de un embrión sin tener que ser microinyectado en un ovocito fecundado.